
Author: 许学文教授团队,四川大学华西医院烧伤整形外科;
周双白副主任团队,上海交通大学医学院附属第九人民医院 ;
Journal: Cell Communication and Signaling(2024) 22:594 (IF8.9)
Publication Time:2024年12月18日
DOI: 10.1186/s12964-024-01978-z
Background
光损伤是皮肤衰老的常见外在原因,UVB会促进活性氧(ROS)生成、诱导DNA损伤,导致皮肤出现多种问题。皮下脂肪组织(SAT)与皮肤结构紧密,临床观察显示富含SAT的区域皮肤质地更好,脂肪移植也对皮肤有益。虽然已知脂肪源性干细胞(ADSCs)和脂肪组织来源EVs(AT- EVs)对皮肤衰老和伤口愈合有治疗作用,但脂肪组织(AT)对皮肤的保护机制及是否由AT- EVs介导尚不明确,因此开展此项研究。
研究的创新性:采用新的腹股沟皮肤模型,明确AT对皮肤的保护作用;运用PBA分析AT- EVs和ADSC- EVs表面蛋白,发现CD151和APNEVs亚群的关键作用;磁珠法分离CD151阳性和阴性AT- EVs,证实CD151促进EVs被细胞摄取。
Methods

ResearchProgress
小鼠皮肤模型、脂肪移植模型构建
研究脂肪组织(AT)的存在是否可以减轻紫外线B(UVB)引起的光老化

建立AT模型:证明脂肪组织(AT)的存在可以减轻紫外线B(UVB)引起的光老化;

腹股沟皮肤模型l经过8周UVB照射实验,AT组皮肤弹性度显著高于对照组(Fig.1b).l组织学分析揭示:AT组表皮较薄,真皮较厚,胶原含量增加,衰老细胞较少。(Fig.1c).
这些研究结果表明,脂肪组织(AT)对防止光老化引起的皮肤衰老有显著的积极作用。
脂肪移植模型l在紫外线B(UVB)照射后(图1d),脂肪移植组中的移植脂肪仍然存活,皮肤看起来比对照组更光滑,皱纹也更少(Fig.1e)lCK-MPA10结果显示,脂肪移植组的黑色素水平降低,皮肤弹性得到改善。(Fig.1f, g). l组织学染色显示,脂肪移植组表现出表皮变薄、真皮增厚、胶原蛋白生成增加以及细胞衰老减少,这与腹股沟皮肤模型的结果一致。(Fig.1h). l光老化核心标志物分子实验分析(qRT-PCR,WB)显示:在脂肪移植组中Col1A1的表达上调,而MMP9和CDKN1A的表达下调,再次证明了脂肪移植组胶原含量增加、胶原降解能力降低以及衰老细胞减少。Fig.1i‒k).
这些发现进一步支持了以下结论:脂肪组织(AT)的存在显著减轻了紫外线B(UVB)诱导的光老化,从而使衰老皮肤恢复年轻。
裸鼠EVs注射实验
进一步研究AT-EVs是否是AT发挥其保护作用的机制

Methods:
EVs表征:electronmicroscopy ,flow NanoAnalyzer、WB
皮肤光老化程度评估:
皱纹数量对比;
CK-MPA10:皮肤弹性与黑色素含量检测;
组织学分析:HE,Masson, Sirius Red, and SA-β-gal staining、situdihydroethidiumred fluorescence staining
分子实验分析:qRT‒PCRand WB(光老化核心标志物:Col1A1、MMP9 a、 CDKN1A)
裸鼠EVs注射实验
进一步研究AT-EVs是否是AT发挥其保护作用的机制

l经过8周UVB照射实验,AT-EV处理的皮肤显示出皱纹数量的减少(Fig.2c).lCK-MPA10:AT-EV组黑色素含量与皮肤弹性明显改善(Fig.2d, e).l组织学分析显示:与UVB组相比,AT-EV组的表皮较薄,真皮较厚,胶原水平增加,衰老细胞较少,ROS水平较低(Fig.2f-k).lAT-EVs调节皮肤基因表达,增加Col1A1的表达并减少MMP9和CDKN1A的表达。(Fig. 2l-n).
实验结果显示,AT-EV组和ADSC-EV组之间没有显著差异,效果相似,这表明AT通过AT-EVs发挥其保护作用。
体外细胞实验
研究AT-EVs对UVB暴露的成纤维细胞的影响

Methods:
细胞种类:NIH3T3和人成纤维细胞
组织学分析:SA-β-gal staining
分子实验:qRT‒PCRand WB(光老化核心标志物Col1A1、MMP9 a、 CDKN1A)
ROS 定量:DCFH2-DA
细胞增殖实验:CCK-8analysis of NIH3T3
体外细胞实验
研究AT-EVs对UVB暴露的成纤维细胞的影响

研究成纤维细胞的目的:在于探讨其在皮肤光老化过程中的作用及其与AT-EVs之间的相互作用;
成纤维细胞是皮肤真皮层的主要细胞类型,负责合成和维持细胞外基质(ECM),尤其是胶原蛋白和弹性纤维。这些成分对于保持皮肤的弹性和紧致性至关重要。随着年龄的增长和紫外线(UVB)辐射的暴露,成纤维细胞的功能会受到影响,导致胶原蛋白降解和弹性纤维破坏,进而引发皮肤光老化。
l分子实验显示:AT-EVs增加了NIH3T3细胞中Col1A1的水平,同时减少了MMP9和CDKN1A的水平(Fig.3b‒d). l经AT-EVs处理的人类成纤维细胞表现出较少的衰老现象,这通过较少的SA-β-gal阳性细胞(图3c, d)得以体现,并且通过DCFH2-DA测量显示ROS积累减少。(Fig. 3g, h).l细胞增殖实验:AT-EVs在紫外线B(UVB)照射后24小时内比ADSC-EVs更快地促进NIH3T3细胞的增殖,这表明AT-EVs可能被细胞更快地吸收,从而更有效地发挥其作用。(Fig.3i).
单囊泡蛋白组分析PBA(260panel)
探究AT-EVs比ADSC-EVs更快被细胞吸收的原因


单囊泡蛋白组分析PBA(260panel)
探究AT-EVs比ADSC-EVs更快被细胞吸收的原因

l FlowNanoAnalyzer:在10毫升的脂肪组织中,AT-EVs的数量约为6.1 × 10¹¹,大约是ADSC-EVs数量的200倍(Fig.4c)。l主成分分析PCA显示:ADSC-EVs和AT-EVs的蛋白表达模式存在差异(Fig.4d)l热图突出了前100种差异表达的表面蛋白,特别显示了AT-EVs中CD151和AdipoQ的表达水平显著更高(Fig.4e)l t-SNE降维分析结合FlowSOM算法将EVs划分为14个聚类(Fig. 4f), 并通过颜色编码显示其来源组别及亚群间差异(Fig.4g)l与ADSC-EVs相比,AT-EVs表现出更丰富的表面蛋白多样性.(Fig.4i)l表面蛋白表达分析表明,AT-EVs中AdipoQ和CD151的表达水平显著高于ADSC-EVs(Fig. 4j).
这些发现揭示了AT-EVs具有更高的亚群多样性,以及CD151和AdipoQ等关键蛋白的更高表达水平,这可能是其更高效细胞摄取能力和UVB暴露下更强保护作用的原因。
AdipoR基因敲除实验
AT-EVs表面的脂联素激活AMPK通路以减轻光老化

l WB分析显示,在NIH3T3-shAdipoR组中,AdipoR的表达显著降低(Fig. 5d, e),表明基因敲除有效;l预先用AT-EVs处理可以缓解UVB诱导的p-AMPKT172减少(Fig. 5f, g).l WB分析表明,AT-EVs和ADSC-EVs都倾向于抑制p-NF-κB p65 S536水平的增加(Fig. 5f, g)liNOS是NF-κB通路的下游分子,在shNC-AT-EV组中的表达低于shAdipoR-AT-EV组(Fig. 5f, g).lγ-H2AX的免疫荧光分析显示,在shNC-AT-EV组中核DNA损伤减少(Fig. 5h, i).
这些结果表明,AT-EVs上的APN可以激活AdipoR,刺激AMPK通路,抑制NF-κB通路,减少UVB诱导的DNA损伤,并保护细胞免受UVB照射.
体外细胞摄取与细胞免疫荧光实验
研究细胞摄取EV快慢是否与CD151有关

Method: 磁珠法分选CD151+ EVs cluster
体外细胞摄取与细胞免疫荧光实验实验
l PBA和WB分析证实,AT-EVs上的CD151表达量高于ADSC-EVs(Fig. 6a). l用400 μg/mlPKH26标记的ADSC-EVs或AT-EVs处理NIH3T3细胞30分钟后,AT-EV组细胞内红色荧光多于ADSC-EVs组(Fig. 6b, c), 表明AT-EVs的细胞摄取速度更快. 此外,AT-EV组的NIH3T3细胞表达了更多的CD151(Fig. 6b, d).l时间推移摄取记录显示,AT-EVs比ADSC-EVs更早被内化. l为了研究AT-EVs上CD151的表达是否促进比ADSC-EVs更快的细胞摄取,研究人员通过磁珠从CD151阴性的AT-EVs中分离出CD151阳性的AT-EVs(Fig. 6e).l WB分析证实了分选过程的有效性(Fig. 6f)l用CD151阳性的AT-EVs处理的细胞显示出增强的红色荧光,表明EVs的摄取速度更快 (Fig. 6g, h), 以及CD151表达升高(Fig.6g, i).
这些发现表明,CD151能够促进细胞对EVs的内吞作用。
研究结论:皮下脂肪组织(AT)通过脂肪组织源性细胞外囊泡(AT-EVs)保护皮肤免受光损伤。AT-EVs组成多样,包含14个亚群,且CD151和APN的表达水平高于脂肪源性干细胞源性细胞外囊泡(ADSC-EVs)。CD151促进AT-EVs的快速内化,而APN激活AMPK通路并抑制NF-κB通路,降低成纤维细胞中的ROS水平,从而保护细胞免受UVB辐射的伤害。AT-EVs产量高且易于快速获取,突显了其在临床应用的潜力。